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小鼠脑组织灌注方法
 日期:2026/4/29 17:47:00 

一、实验前准备

试剂配制

  1.0.01M PBS(pH7.4):室温/37℃预热,用量20mL/只

  2.4%多聚甲醛(PFA):PBS配制,4℃预冷,用量20mL/只

  3.麻醉剂:1%戊巴比妥钠,现配现用

器械准备

  眼科剪、眼科镊、止血钳、22-25G磨钝针头、50mL注射器、解剖板、碘伏、医用棉球

二、实验操作步骤

  1.小鼠麻醉:1%戊巴比妥钠腹腔注射,剂量40-60mg/kg,待角膜反射消失、肌肉松弛,确认麻醉成功

  2.固定消毒:小鼠仰卧固定于解剖板,胸部皮肤碘伏消毒

  3.暴露心脏:剑突下剪开皮肤,分离胸肌,沿肋骨剪开胸骨,充分暴露心脏

  4.穿刺固定:左手固定心脏,右手持磨钝针头从左心室心尖斜向头端刺入,止血钳固定针头

  5.排血冲洗:剪开右心耳放血,缓慢推注PBS,直至右心耳流出液清亮、肝脏完全变白

  6.组织固定:换预冷4%PFA缓慢灌注,直至小鼠四肢僵硬、躯干紧绷,停止灌注

  7.取材后固定:快速断头剥离全脑,放入4%PFA,4℃后固定24-48h,备用

三、关键操作参数

  •灌注速度:PBS 5-10mL/min,4%PFA 3-5mL/min

  •灌注总量:每只小鼠PBS、PFA各15-20mL

  •针头要求:必须磨钝,避免刺破心室壁

四、注意事项&故障排除

  1.灌注前注射器、针头彻底排尽气泡,避免空气栓塞

  2.针头误入右心室:立即退针,重新穿刺左心室

  3.流出液持续发红:检查针头位置、扩大右心耳开口,补足PBS灌注量

  4.全程动作轻柔,避免牵拉心脏导致灌注失败

  5.4%PFA具有刺激性,操作时做好防护


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